线粒体与细胞凋亡密切相关,其中线粒体跨膜电位(△Ψmt)的破坏,被认为是细胞凋亡级联反应过程中最早发生的事件之一,它发生在细胞核凋亡特征(染色质浓缩、DNA断裂)出现之前,一旦线粒体跨膜电位崩溃,则细胞凋亡不可逆转。 线粒体膜电位(mitochondrial membrane potential)△Ψm的下降是细胞凋亡早期的一个标志性事件,常用JC-1或JC-10来检测。虽然JC-1在许多实验中被广泛地的应用,但是其水溶性差的特性也使其很难在一些实验中使用,即使是在浓度为1uM的条件下,JC-1也会在水的缓冲液中析出。JC-10是一种可以在需要高浓度染料的实验中替代JC-1的产品,与JC-1相比,贝博® 的JC-10具有更好的水溶性。 JC-10可以选择性的进入线粒体,并且由于膜电位的增加,其颜色会发生从绿色到橙红色的可逆性改变。这种特性是由于JC-10聚合物的可逆结构,在膜电位增加的条件下,它的发射光由520nm(JC-10 单体发射光)转移到570nm (JC-10聚合体发射光)。当在490nm处激发时,JC-10发生从绿色到橙红色的可逆改变,因为线粒体膜极化的更大。这两种颜色都可以被流式细胞仪上装好的一般滤光器检测到,因此绿色发射光可以通过荧光通道1(FL1)进行分析,橙红色发射光可以通过荧光通道2(FL2)进行分析。它除了可以用于流式细胞术,也可以用于荧光成像分析。在一些细胞系中JC-10有着比JC-1更好的表现,不过,JC-10的性能表现对细胞系极具依赖性。 贝博® 所提供的JC-10溶解于DMSO溶液中。JC-10可以检测细胞、组织或纯化的线粒体膜电位。正常细胞内,在线粒体膜电位较高时,JC-10选择性聚集在线粒体基质中形成可逆的橙红色荧光聚合物(Ex=510nm / Em=570nm),在488nm激发时的最大发射波长为570nm,可以产生橙红色荧光;当细胞发生凋亡时,线粒体膜电位较低,发生膜电位的下降或丧失,JC-10不能聚集在线粒体的基质中,JC-10由多聚体转变为绿色荧光单体(Ex=510nm / Em=520nm)形式存在于胞浆中,在488nm激发时最大发射波长为520nm,可以产生绿色荧光,形成流式图中细胞FL1阳性。凋亡细胞则大多为FL1单阳性。这样就可以非常方便地通过荧光颜色的转变来检测线粒体膜电位的变化。常用红绿荧光的相对比例来衡量线粒体去极化的比例。 通过JC-10从橙红色荧光到绿色荧光的转变可以很容易地检测到细胞膜电位的下降,同时也可以用JC-10从橙红色荧光到绿色荧光的转变作为细胞凋亡早期的一个检测指标。 贝博® BBcellProbe® JC-10线粒体膜电位检测试剂盒可以快速灵敏地检测细胞、组织或纯化的线粒体膜电位变化,可以用于早期的细胞凋亡检测。试剂盒染料与其他的阳离子染料如DiOC6(3)和罗丹明123相比,特异性更高,对线粒体膜电位变化的特异性高于质膜电位变化,对线粒体去极化检测的检测一致性更好;红绿色荧光强度比率只受线粒体膜电位的变化,不受线粒体大小,形状,密度的差异干扰;检测灵敏度强,对细胞应激反应的微小异质性都能辨别。
2.开盖后组份按要求条件保存。
3.拆封后请尽快使用完!
2.激光共聚焦
3.荧光显微镜
2.贴壁细胞
2.激光共聚焦
3.荧光显微镜
2.离心机
3.移液器
4.冰箱
5.冰盒
2.或者HBSS(Hank's Balanced Salt Solution)
2.吸头
3.一次性手套
4.铝箔
2.冬天JC-10在温度较低时会凝固,可以20~25℃水浴温育片刻全部融解后离心使用。
3.JC-10可以根据实验安排小量分装后,每次使用一管。
4.细胞处理需要小心操作,尽量避免人为的损伤细胞。
5.始终保持平衡染液中pH值的一致性,因为pH值的变化将影响膜电位。
6.与染料达到平衡的细胞悬液中如果含有蛋白,他们将与部分染料结合,降低染料的浓度,引起假去极化。
7.根椐细胞种类、实验条件不同流式细胞仪设置不同。
8.JC-10染色并洗涤后尽量在30分钟内完成后续检测。在检测前需冰浴保存。
1. 1X染色缓冲液和JC-10染色工作液的配制:
根据样品数按下列比例配制1X染色缓冲液和JC-10染色工作液。 取100μl 10×染色缓冲液加900μl无菌纯水稀释,混匀并预热至37℃,即成1×染色缓冲液;
用1×染色缓冲液将JC-10稀释1000-3000倍,充分混匀配成JC-10染色工作液。
2. 收集样本细胞以及阴性、阳性对照细胞。细胞数量在2-5X105个。
3. 用PBS洗涤细胞两次。离心收集细胞。
4. 用500μl JC-10染色工作液将细胞重悬,37℃,5% CO2的培养箱中孵育15-60分钟。
5. 用流式细胞仪或荧光分光光度计检测分析结果,或者用荧光显微镜或激光共聚焦显微镜观察结果。
贴壁细胞
对于贴壁细胞,可以先收集细胞,重悬后参考悬浮细胞的检测方法。
纯化线粒体
1. 把配制好的JC-10 染色工作液再用1X染色缓冲液稀释5 倍。
2. 在0.9mL 5倍稀释的1X JC-10 染色工作液中加入0.1mL 总蛋白量为10~100ug的纯化的线粒体。
3. 结果检测。
组织样本
组织样本可以用玻璃匀浆器匀浆成单细胞悬液后按照细胞样本的方法检测。也可以用其他细胞悬液制备的试剂盒处理组织后检测。
结果分析 :
检测JC-10单体时可以把激发光设置为490nm,发射光设置为520-530nm;检测JC-10聚合物时,可以把激发光设置为525-540nm,发射光设置为570-600nm。
用流式细胞仪检测细胞凋亡的情况,绿色荧光通过FL1通道检测;红色荧光通过FL2通道检测。FL-1+,FL-2+为正常细胞,FL-1+,FL-2—为凋亡细胞。也可以计算红色荧光信号与绿色荧光信号的比值,用来判断细胞健康程度。
用荧光显微镜或激光共聚焦显微镜观察:
检测JC-10单体时可以参考观察其它绿色荧光时的设置,如观察GFP或FITC时的设置(FITC通道);检测JC-10聚合物时可以参考观察其它红色荧光,如PI或Cy3时的设置(TRITC通道)。
出现绿色荧光说明线粒体膜电位下降,并且该细胞很可能处于细胞凋亡早期。出现红色荧光说明线粒体膜电位比较正常,细胞的状态也比较正常。
用荧光分光光度计或荧光酶标仪检测:
激发波长为485nm,发射波长为590nm。如果使用荧光酶标仪,激发波长不能设置为485nm 时,可以在475~520nm 范围内设置激发波长。
不能单独用红色或绿色荧光强度来判断线粒体膜电位,而必须使用红绿荧光的相对变化,即红绿荧光强度的比值做为指标来判断膜电位变化。
以细胞群的平均红、绿荧光强度,计算红/绿荧光强度的比值(Ratio),根据重复实验数据,对Ratio进行统计,反映膜电位变化。
流式分析时,相对于正常对照,凋亡阳性处理的细胞群会往右下方发生移动,即红色荧光减弱,绿色荧光增强,这表明阳性处理导致线粒体膜电位下降。
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