-20℃ 避光保存。

1.避免反复冻融。可以根据需要分装后冻存。
2.探针液A为DMSO溶液，冬季气温较低时为凝固状态，极易粘附在管壁、吸头壁。注意需要加热融解，变成液体状态后离心至管底部再开盖。
3.可以用手捂住使其融解或37℃短时间水浴。吸头也需要放在培养箱预热，否者容易再次凝固在吸头内壁产生损耗。
4.试剂拆封后请尽快使用完

6个月

1.荧光分光光度计
2.荧光酶标仪
3.流式细胞仪
4.荧光显微镜
5.激光共聚焦

1.悬浮细胞2.贴壁细胞

1.使用方便：可用荧光分光光度计、荧光酶标仪或流式细胞仪检测；
2.背景低，灵敏度高；
3.线性范围宽，使用方便。

1.荧光分光光度计
2.荧光酶标仪
3.流式细胞仪
4.荧光显微镜
5.激光共聚焦

1.荧光分光光度计或酶标仪或激光共聚焦显微镜或流式细胞仪，
2.离心机
3.移液器
4.冰箱
5.冰盒

1.PBS缓冲液或者HBSS

1.离心管
2.吸头
3.一次性手套
4.黑色96孔板

1.螺旋盖微量试剂管装的试剂在开盖前请短暂离心，将盖内壁上的液体收集至管底，避免开盖时液体洒落。
2.荧光探针标记后，一定要洗净残余的未进入细胞内的探针，否则会导致背景较高。
3.探针标记完毕并洗净残余探针后，可以进行激发波长的扫描和发射波长的扫描，以确认探针的标记情况是否正常。
4.尽量缩短探针标记后到测定所用的时间，以减少各种可能的误差。
5.过氧化氢O18探针在光照和空气中易被氧化，注意避光密封保存。
6.O18染色工作液必须现配现用，并且在当天用完。
7.BBoxiProbe® O18对湿度非常敏感，若是O18溶液每次取完需要量后，必须紧紧密封盖子。建议根据单次用量，分装密封保存。不可使用含水的吸头。
8.对不同的细胞，应选择合适的孵育时间和浓度，以观察过氧化氢的变化，很多细胞内的过氧化氢绝对水平较低，需要根据实际情况适当延长孵育时间。
9.过氧化氢O18探针可以根据需要的用量分装后冻存，避免反复冻融。
10.过氧化氢O18不可以一次性全部稀释后长期保存不用，稀释后稳定性变差，有效期缩短。
11.必须使用荧光检测专用的黑色96孔板。

过氧化氢探针BBoxiProbe® O18配制：
根据样本数量计算需要的用量，用试剂B探针稀释液将过氧化氢O18探针10倍稀释后充分混匀。
再用HBSS缓冲盐溶液稀释100-500倍至染色所需的工作液浓度。

探针标记
原位标记：仅适用于贴壁培养细胞。
1. 培养板/培养皿准备细胞样本。
2. 待细胞生长到合适丰度，去除细胞培养基，用PBS洗细胞一次。
3. 加入适量体积37℃预热的含O18探针工作液。
4. 在37℃细胞培养箱内于生长状态下避光孵育20分钟～40分钟（具体孵育时间需根据细胞类型而定，需预实验优化）。
5. 移除染色液，用PBS（pH7.4）洗涤细胞3次。以充分去除未进入细胞内的O18探针。
6. 加入200 μL HBSS缓冲液。
7. 荧光酶标仪、荧光显微镜（含合适滤片）检测。最大激发/发射波长为516 nm / 606 nm。

收集后标记：悬浮细胞或贴壁细胞消化处理
1. 离心，吸除上清培养基。
2. 用PBS洗细胞一次。
3. 细胞收集后重悬浮于稀释好的37℃预热的O18探针工作液中，细胞浓度为1*106-2*107/毫升。
4. 于生长状态下37℃细胞培养箱内避光孵育20-30分钟（具体时间需根据细胞类型而定，需预实验优化）。每隔3-5分钟颠倒混匀一下，使探针和细胞充分接触。
5. 离心，吸除染色液，加入PBS（pH7.4）重悬细胞，洗涤3次。以充分去除未进入细胞内的O18探针。
6. 用HBSS/PBS/无血清细胞培养基重悬细胞。
7. 用荧光光度计、荧光酶标仪、流式细胞仪检测。
最大激发/发射波长为516 nm / 606 nm。

活性氧检测：
1. 对于原位标记探针的样品可以用荧光酶标仪检测，或者用激光共聚焦显微镜、荧光显微镜，直接拍照分析（需要有相关的荧光强度分析软件）。
2. 或收集细胞后标记探针然后用荧光分光光度计、荧光酶标仪或流式细胞仪检测。
3. 对于收集细胞后标记探针的样品可以用荧光分光光度计、荧光酶标仪或流式细胞仪检测，用激光共聚焦显微镜直接拍照分析也可以（需要有相关的荧光强度分析软件）。
4. 使用516 nm激发波长，606 nm发射波长，实时或逐时间点检测刺激前后荧光的强弱。
5. 荧光强度强，过氧化氢含量高。
【注】:
 如果用显微镜拍照分析的话，需要细胞分布均匀。

1.结果如何分析？
本试剂盒是定性检测试剂盒。可以通过设置参照样本，以参照样本的倍数来反映目标样本相对含量变化，这个“相对”是针对参照的。分析结果是定性的，也是没有单位的，因为它本质上是一个比值（目标/参照）。反映的是模型样本通过具体的干预措施（如养分缺失、缺氧、药物治疗或遗传基因操控等）如何影响其过氧化氢的变化，测定其过氧化氢是增加或者降低了。

2.荧光照片如何分析？
需要有相关的荧光强度分析软件。过氧化氢表达水平直接通过荧光信号的强弱和分布范围来体现。
有的显微镜扫描下来的图像本身就可以测面积和强度，可以同时测不同颜色的荧光强度。有的显微镜不支持此功能，可以将荧光染色彩色图像转换为黑白的灰度图，然后再以灰度值作为测量指标进行分析。
要结合明场的照片具体分析。如果细胞分布均匀可以算固定面积荧光强度。成像时中心和四周有差异时，一般将四周剪切掉也可以。如果细胞分布不匀，需要找到细胞分布匀称的视野，一个视野一个视野找。
如果要用图片做结果，就要平行做多个图片，作分析，统计，每张都要求荧光分布尽量一致。
为了去除杂光的影响，可以适当调节统计荧光的强度范围，将信号过弱的背景杂光去除掉。对照组和实验组整张图片需要做同样的处理，保证所有参数均要一致。
对于不同情况荧光强度的统计方法，根据实验需要或参考文献。可以算等面积的平均强度；也可以算阈值高于一定值的平均强度；也可以算荧光的累积而不算平均。要根据课题需要选择合适的测量统计方法。

3.荧光照片效果不好？
荧光拍照存在很多变量，每一个变量都会严重影响拍照效果。
荧光拍摄条件：拍摄环境、显微镜品牌和激发荧光决定了镜下观察的效果。同样的操作方法和切片，在不同品牌显微镜下显示出完全不同的荧光强度。
荧光衰减：荧光物质的衰减通常都是非常明显的。同样的一组切片，1小时内拍摄和8小时后拍摄，荧光效果完全不同。
最好用激光共聚焦显微镜，激光共聚焦显微镜的分辨率比普通荧光显微镜要高的多，通常同一张片子激光共聚焦的效果明显更优。

4.背景荧光比较高？
在没有细胞外酯酶和其他氧化酶的情况下，荧光随时间的逐渐增加可能是来自自发水解，导致水解的原因可能与大气氧化或光诱导氧化有关。

5.荧光强度在变化？
可以观察到荧光的逐渐增加（由于自动氧化）或减少（由于细胞中的染料损失或光漂白）。在没有任何刺激或诱导的情况下，健康的未经处理的细胞中的荧光突发可以指示细胞死亡或一些其他氧化事件的进展。
注意检测时平行操作即可。

1.Huijie An et al.
Hydrogen Peroxide-Activatable Nanoparticles for Luminescence Imaging and In Situ Triggerable Photodynamic Therapy of Cancer
ACS Applied Materials & Interfaces 2020

2.Yun Zhang et al.
TGF-β3 Induces Autophagic Activity by Increasing ROS Generation in a NOX4-Dependent Pathway
Mediators of Inflammation 2019