产品概述
product description
贝博® BBproExtra® 线粒体蛋白/胞浆蛋白提取试剂盒提供全套试剂,适用于从各种原代或传代细胞和各种实体组织,如脑、脊髓、神经结或纤维、脂肪、肝脏、消化道、肾脏、心脏、肌肉、血管、结缔组织等哺乳动物组织中提取线粒体蛋白和胞浆蛋白。提取过程简单方便。制备的线粒体蛋白不仅纯度高,保持天然活性,而且绝少交叉污染。 本试剂盒含有的蛋白酶抑制剂混合物,阻止了蛋白酶对蛋白的降解,为提取高纯度的蛋白提供了保证。 本试剂盒提取的蛋白可用于Western Blotting、蛋白质电泳、免疫沉淀、ELISA、转录活性分析、Gel shift凝胶阻滞实验、酶活性测定等下游蛋白研究实验。 本试剂盒提取的蛋白为具有天然蛋白构象的活性蛋白。 本试剂盒中不含有EDTA,与金属螯和层析等下游应用兼容。
保存温度
2-8℃
注意事项
1.蛋白酶抑制剂未开盖使用前也可以2-8℃储存。开盖使用后-20℃储存。
2.蛋白酶抑制剂在2-8℃低温时是固体状态,从冰箱取出后恢复至室温或37℃短时间水浴,变成液体状态后离心至管底部再开盖。
3.试剂拆封后请尽快使用完!
2.蛋白酶抑制剂在2-8℃低温时是固体状态,从冰箱取出后恢复至室温或37℃短时间水浴,变成液体状态后离心至管底部再开盖。
3.试剂拆封后请尽快使用完!
有效期
一年
检测方法
WB,IP等
适用样本
动物细胞/组织
产品特点
1.使用方便。
2.含蛋白稳定剂,提取的蛋白稳定。
3.紫外检测蛋白浓度时,背景干扰低。
4.蛋白酶抑制剂抑制了蛋白的降解,蛋白酶抑制剂配方优化。蛋白酶抑制剂混合物包含6种独立的蛋白酶抑制剂;每一种抑制剂可特异性抑制某一种或几种蛋白酶活性。该混合物优化的组成使其可以抑制几乎所有重要的蛋白酶活性。
2.含蛋白稳定剂,提取的蛋白稳定。
3.紫外检测蛋白浓度时,背景干扰低。
4.蛋白酶抑制剂抑制了蛋白的降解,蛋白酶抑制剂配方优化。蛋白酶抑制剂混合物包含6种独立的蛋白酶抑制剂;每一种抑制剂可特异性抑制某一种或几种蛋白酶活性。该混合物优化的组成使其可以抑制几乎所有重要的蛋白酶活性。
产品应用
WB,IP等
仪器准备
1.离心机
2.振荡器
3.涡旋混匀器
4.移液器
5.冰箱
6.冰盒
2.振荡器
3.涡旋混匀器
4.移液器
5.冰箱
6.冰盒
试剂准备
1.PBS缓冲液
2.蛋白定量试剂盒
2.蛋白定量试剂盒
耗材准备
1.离心管
2.吸头
3.一次性手套
2.吸头
3.一次性手套
使用注意事项
使用注意事项:
旋帽离心管装的试剂在开盖前请短暂离心,将盖内壁上的液体甩至管底,避免开盖时液体洒落。
实验过程中的所有试剂须预冷;所有器具须放-20℃冰箱预冷。整个过程须保持样品处于低温。
蛋白酶抑制剂储存期间溶液如果出现沉淀,不影响使用,溶解后正常使用。
可以根据自己实验需要加入其它蛋白酶抑制剂单品。
最好使用标准Dounce匀浆器匀浆,如果没有标准Dounce匀浆器,用普通玻璃匀浆器匀浆也可,但是线粒体蛋白回收率将可能大幅下降。也可采用超声破碎的方法,建议功率30w,10s间隔10s。采用普通匀浆器或超声破碎,建议超声过程中镜检,保证细胞80%左右的破碎率,不能超声过度,否则可能会严重破坏线粒体,导致无法回收线粒体蛋白。
旋帽离心管装的试剂在开盖前请短暂离心,将盖内壁上的液体甩至管底,避免开盖时液体洒落。
实验过程中的所有试剂须预冷;所有器具须放-20℃冰箱预冷。整个过程须保持样品处于低温。
蛋白酶抑制剂储存期间溶液如果出现沉淀,不影响使用,溶解后正常使用。
可以根据自己实验需要加入其它蛋白酶抑制剂单品。
最好使用标准Dounce匀浆器匀浆,如果没有标准Dounce匀浆器,用普通玻璃匀浆器匀浆也可,但是线粒体蛋白回收率将可能大幅下降。也可采用超声破碎的方法,建议功率30w,10s间隔10s。采用普通匀浆器或超声破碎,建议超声过程中镜检,保证细胞80%左右的破碎率,不能超声过度,否则可能会严重破坏线粒体,导致无法回收线粒体蛋白。
使用方法
细胞样本提取:
1. 试剂配制
根据样本数,每200ul试剂C和试剂D中分别加入1ul蛋白酶抑制剂混合物,充分混匀后置2-8℃备用。
2. 取1-2×107个细胞,在4℃,500×g条件下离心3分钟,小心吸取培养基,尽可能吸干,收集细胞。
3. 用冷PBS洗涤细胞两次,每次洗涤后尽可能吸干上清。
4. 加入200μl冷的试剂 A,置冰上5分钟。
5. 用Dounce匀浆器充分匀浆20-30下。
6. 然后在4℃,500×g条件下离心5分钟。弃沉淀,留上清。
7. 将上清在4℃,800×g条件下离心5分钟。弃沉淀,留上清。
8. 将上清在4℃,11000×g条件下离心15分钟。收集上清(I),收集沉淀(I)。
9. 将步骤8中的上清(I)吸入另一预冷的干净离心管,加入200ul试剂C,充分混匀,在4℃振荡10分钟。
10. 在12000×g条件下离心5分钟,取上清,即得胞浆蛋白。
11. 在步骤8的沉淀(I)中加入200μl冷的试剂B,充分混匀。
12. 在4℃,11000×g条件下离心20分钟。弃上清,留沉淀。
13. 在沉淀中加入80ul-150ul试剂D,充分混匀,在4℃条件下振荡20-30分钟。
14. 在4℃,12000×g条件下离心15分钟。
15. 收集上清,即得线粒体蛋白。
16. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
组织样本提取:
1. 试剂配制
根据样本数,每200ul试剂C和试剂D中分别加入1ul蛋白酶抑制剂混合物,充分混匀后置2-8℃备用。
2. 取50-100mg新鲜组织样本,用冷PBS洗干净。
3. 加入300μl冷的试剂 A,用Dounce匀浆器充分匀浆20-30下。
4. 然后在4℃,500×g条件下离心5分钟。弃沉淀,留上清。
5. 将上清在4℃,800×g条件下离心5分钟。弃沉淀,留上清。
6. 将上清在4℃,11000×g条件下离心15分钟。收集上清(I),收集沉淀(I)。
7. 将步骤8中的上清(I)吸入另一预冷的干净离心管,加入200ul试剂C,充分混匀,在4℃振荡10分钟。
8. 在12000×g条件下离心5分钟,取上清,即得胞浆蛋白。
9. 在步骤6的沉淀(I)中加入200μl冷的试剂B,充分混匀。
10. 在4℃,11000×g条件下离心20分钟。弃上清,留沉淀。
11. 在沉淀中加入80ul-150ul试剂D,充分混匀,在4℃条件下振荡20-30分钟。
12. 在4℃,12000×g条件下离心15分钟。
13. 收集上清,即得线粒体蛋白。
14. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
1. 试剂配制
根据样本数,每200ul试剂C和试剂D中分别加入1ul蛋白酶抑制剂混合物,充分混匀后置2-8℃备用。
2. 取1-2×107个细胞,在4℃,500×g条件下离心3分钟,小心吸取培养基,尽可能吸干,收集细胞。
3. 用冷PBS洗涤细胞两次,每次洗涤后尽可能吸干上清。
4. 加入200μl冷的试剂 A,置冰上5分钟。
5. 用Dounce匀浆器充分匀浆20-30下。
6. 然后在4℃,500×g条件下离心5分钟。弃沉淀,留上清。
7. 将上清在4℃,800×g条件下离心5分钟。弃沉淀,留上清。
8. 将上清在4℃,11000×g条件下离心15分钟。收集上清(I),收集沉淀(I)。
9. 将步骤8中的上清(I)吸入另一预冷的干净离心管,加入200ul试剂C,充分混匀,在4℃振荡10分钟。
10. 在12000×g条件下离心5分钟,取上清,即得胞浆蛋白。
11. 在步骤8的沉淀(I)中加入200μl冷的试剂B,充分混匀。
12. 在4℃,11000×g条件下离心20分钟。弃上清,留沉淀。
13. 在沉淀中加入80ul-150ul试剂D,充分混匀,在4℃条件下振荡20-30分钟。
14. 在4℃,12000×g条件下离心15分钟。
15. 收集上清,即得线粒体蛋白。
16. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
组织样本提取:
1. 试剂配制
根据样本数,每200ul试剂C和试剂D中分别加入1ul蛋白酶抑制剂混合物,充分混匀后置2-8℃备用。
2. 取50-100mg新鲜组织样本,用冷PBS洗干净。
3. 加入300μl冷的试剂 A,用Dounce匀浆器充分匀浆20-30下。
4. 然后在4℃,500×g条件下离心5分钟。弃沉淀,留上清。
5. 将上清在4℃,800×g条件下离心5分钟。弃沉淀,留上清。
6. 将上清在4℃,11000×g条件下离心15分钟。收集上清(I),收集沉淀(I)。
7. 将步骤8中的上清(I)吸入另一预冷的干净离心管,加入200ul试剂C,充分混匀,在4℃振荡10分钟。
8. 在12000×g条件下离心5分钟,取上清,即得胞浆蛋白。
9. 在步骤6的沉淀(I)中加入200μl冷的试剂B,充分混匀。
10. 在4℃,11000×g条件下离心20分钟。弃上清,留沉淀。
11. 在沉淀中加入80ul-150ul试剂D,充分混匀,在4℃条件下振荡20-30分钟。
12. 在4℃,12000×g条件下离心15分钟。
13. 收集上清,即得线粒体蛋白。
14. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
常见问题分析
1.蛋白浓度低?
处理部分组织样本时可能没有裂解完全,导致蛋白浓度低。只要适当延长试剂D的处理时间即可。最好在持续振荡的条件下处理,没有振荡器也可间隔几分钟用吸头吹打混匀。
2.用什么方法定量蛋白?
建议用BCA法。不适合用Bradford法,因为试剂CD中含有干扰Bradford法的组份,导致定量不准。如果已经进行过透析处理或者用脱盐柱改换过缓冲体系,则可以用Bradford法定量。
3.提取的蛋白具有活性吗?
本试剂盒不含有离子型去垢剂组份,不破坏蛋白的结构,没有对蛋白质之间原有的相互作用的破坏,蛋白均保持其天然构象和活性。
处理部分组织样本时可能没有裂解完全,导致蛋白浓度低。只要适当延长试剂D的处理时间即可。最好在持续振荡的条件下处理,没有振荡器也可间隔几分钟用吸头吹打混匀。
2.用什么方法定量蛋白?
建议用BCA法。不适合用Bradford法,因为试剂CD中含有干扰Bradford法的组份,导致定量不准。如果已经进行过透析处理或者用脱盐柱改换过缓冲体系,则可以用Bradford法定量。
3.提取的蛋白具有活性吗?
本试剂盒不含有离子型去垢剂组份,不破坏蛋白的结构,没有对蛋白质之间原有的相互作用的破坏,蛋白均保持其天然构象和活性。
参考文献
1.Tao Li, Youtan Liu, Wei Xu, et al.
Polydatin mediates Parkin-dependent mitophagy and protects against mitochondria-dependent apoptosis in acute respiratory distress syndrome
Laboratory Investigation 2019 (IF=4.254)
2.JieOuyang, ZhenhuaZeng et al.
SIRT3 Inactivation Promotes Acute Kidney Injury Through Elevated Acetylation of SOD2 and p53
Journal of Surgical Research 2019 (IF=2.051)
3.Zhenhua Zeng, Zhongqing Chen, et al.
Polydatin Protecting Kidneys against Hemorrhagic Shock-Induced Mitochondrial Dysfunction via SIRT1 Activation and p53 Deacetylation
Oxidative Medicine and Cellular Longevity 2016 (IF=4.492)
4.Wei Xiong, Shiyuan Xu, et al.
Moderate hypothermia ameliorates enterocyte mitochondrial dysfunction in severe shock and reperfusion
Journal of Surgical Research 2016 (IF=2.198)
Polydatin mediates Parkin-dependent mitophagy and protects against mitochondria-dependent apoptosis in acute respiratory distress syndrome
Laboratory Investigation 2019 (IF=4.254)
2.JieOuyang, ZhenhuaZeng et al.
SIRT3 Inactivation Promotes Acute Kidney Injury Through Elevated Acetylation of SOD2 and p53
Journal of Surgical Research 2019 (IF=2.051)
3.Zhenhua Zeng, Zhongqing Chen, et al.
Polydatin Protecting Kidneys against Hemorrhagic Shock-Induced Mitochondrial Dysfunction via SIRT1 Activation and p53 Deacetylation
Oxidative Medicine and Cellular Longevity 2016 (IF=4.492)
4.Wei Xiong, Shiyuan Xu, et al.
Moderate hypothermia ameliorates enterocyte mitochondrial dysfunction in severe shock and reperfusion
Journal of Surgical Research 2016 (IF=2.198)
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