产品概述
product description
线粒体(mitochondria)是真核细胞中产生能量的重要细胞器。细胞中的能源物质—脂肪、糖、部分氨基酸在此进行最终的氧化,并通过偶联磷酸化生成ATP,供给细胞生理活动之需。对线粒体结构与功能的研究通常是在离体的线粒体上进行的。 贝博® BBproExtra® 酵母线粒体蛋白提取试剂盒提供全套试剂,适用于从各种酵母样品中提取线粒体。提取过程简单方便。 本试剂盒含有的蛋白酶抑制剂混合物,阻止了蛋白酶对蛋白的降解,为提取高纯度的蛋白提供了保证。 本试剂盒提取的蛋白可用于Western Blotting、蛋白质电泳、免疫沉淀、ELISA、转录活性分析、Gel shift凝胶阻滞实验、酶活性测定等下游蛋白研究实验。 本试剂盒提取的蛋白为具有天然蛋白构象的活性蛋白,下游应用范围广,提取液裂解细胞的能力较温和,需要根据实际样本情况优化裂解时间。 本试剂盒中不含有EDTA,与金属螯和层析等下游应用兼容。
保存温度
2-8℃
注意事项
1.蛋白酶抑制剂未开盖使用前也可以2-8℃储存。开盖使用后-20℃储存。
2.蛋白酶抑制剂在2-8℃低温时是固体状态,从冰箱取出后恢复至室温或37℃短时间水浴,变成液体状态后离心至管底部再开盖。
3.试剂拆封后请尽快使用完!
2.蛋白酶抑制剂在2-8℃低温时是固体状态,从冰箱取出后恢复至室温或37℃短时间水浴,变成液体状态后离心至管底部再开盖。
3.试剂拆封后请尽快使用完!
有效期
一年
检测方法
WB,IP等
适用样本
酵母
产品应用
WB,IP等
仪器准备
1.离心机
2.振荡器
3.涡旋混匀器
4.移液器
5.冰箱
6.冰盒
2.振荡器
3.涡旋混匀器
4.移液器
5.冰箱
6.冰盒
试剂准备
1.PBS缓冲液
2.蛋白定量试剂盒
2.蛋白定量试剂盒
耗材准备
1.离心管
2.吸头
3.一次性手套
2.吸头
3.一次性手套
使用注意事项
使用注意事项:
旋帽离心管装的试剂在开盖前请短暂离心,将盖内壁上的液体甩至管底,避免开盖时液体洒落。
蛋白酶抑制剂在2-8℃时是固体状态,从冰箱取出后恢复至室温或37℃短时间水浴,变成液体状态后离心至管底部再开盖。
实验过程中的所有试剂须预冷;所有器具须放-20℃冰箱预冷。整个过程须保持样品处于低温。
蛋白酶抑制剂储存期间溶液如果出现沉淀,不影响使用,溶解后正常使用。
如果试剂盒不能短时间内用完,蛋白酶抑制剂混合物不可以一次全部加入提取液。
可以根据自己实验需要加入其它蛋白酶抑制剂单品。
旋帽离心管装的试剂在开盖前请短暂离心,将盖内壁上的液体甩至管底,避免开盖时液体洒落。
蛋白酶抑制剂在2-8℃时是固体状态,从冰箱取出后恢复至室温或37℃短时间水浴,变成液体状态后离心至管底部再开盖。
实验过程中的所有试剂须预冷;所有器具须放-20℃冰箱预冷。整个过程须保持样品处于低温。
蛋白酶抑制剂储存期间溶液如果出现沉淀,不影响使用,溶解后正常使用。
如果试剂盒不能短时间内用完,蛋白酶抑制剂混合物不可以一次全部加入提取液。
可以根据自己实验需要加入其它蛋白酶抑制剂单品。
使用方法
1. 提取液准备:
每500ul冷的酵母线粒体蛋白提取液D中加入2ul蛋白酶抑制剂混合物,混匀后置冰上备用。
2. 酵母培养物,在4℃,1000×g条件下离心5-10分钟,小心吸取培养基,尽可能吸干,收集酵母沉淀。
3. 用PBS洗涤酵母两次,每次洗涤后尽可能吸干上清。
4. 每100-200ul体积或100-200mg湿重酵母沉淀物中加入400ul酵母线粒体提取液A,混匀后,在30℃条件下保温15分钟。
5. 在1000×g条件下离心5-10分钟,收集酵母沉淀。
6. 酵母沉淀物中加入500ul酵母线粒体提取液B,充分混匀后。
7. 在37℃或室温条件下轻微振荡60-90分钟。
8. 在2000g条件下离心5-10分钟,弃上清,收集沉淀。
9. 沉淀用PBS洗涤两次。离心收集沉淀。
10. 在沉淀中加入800μl酵母线粒体提取液 C,充分混匀,然后在振荡器上振荡15-30分钟。
11. 在4℃,500×g条件下离心5分钟,弃沉淀,收集上清。
12. 将上清在4℃,2000×g条件下离心5分钟,弃沉淀,收集上清。
13. 将上清在4℃,14000×g条件下离心20分钟。弃上清,收集沉淀。
14. 在沉淀中加入200-300μl线粒体蛋白提取液D,充分混匀。
15. 在4℃条件下振荡20-30分钟。
16. 在4℃,14000×g条件下离心15分钟。
17. 将上清吸入另一预冷的干净离心管,即可得到酵母线粒体总蛋白。
18. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
每500ul冷的酵母线粒体蛋白提取液D中加入2ul蛋白酶抑制剂混合物,混匀后置冰上备用。
2. 酵母培养物,在4℃,1000×g条件下离心5-10分钟,小心吸取培养基,尽可能吸干,收集酵母沉淀。
3. 用PBS洗涤酵母两次,每次洗涤后尽可能吸干上清。
4. 每100-200ul体积或100-200mg湿重酵母沉淀物中加入400ul酵母线粒体提取液A,混匀后,在30℃条件下保温15分钟。
5. 在1000×g条件下离心5-10分钟,收集酵母沉淀。
6. 酵母沉淀物中加入500ul酵母线粒体提取液B,充分混匀后。
7. 在37℃或室温条件下轻微振荡60-90分钟。
8. 在2000g条件下离心5-10分钟,弃上清,收集沉淀。
9. 沉淀用PBS洗涤两次。离心收集沉淀。
10. 在沉淀中加入800μl酵母线粒体提取液 C,充分混匀,然后在振荡器上振荡15-30分钟。
11. 在4℃,500×g条件下离心5分钟,弃沉淀,收集上清。
12. 将上清在4℃,2000×g条件下离心5分钟,弃沉淀,收集上清。
13. 将上清在4℃,14000×g条件下离心20分钟。弃上清,收集沉淀。
14. 在沉淀中加入200-300μl线粒体蛋白提取液D,充分混匀。
15. 在4℃条件下振荡20-30分钟。
16. 在4℃,14000×g条件下离心15分钟。
17. 将上清吸入另一预冷的干净离心管,即可得到酵母线粒体总蛋白。
18. 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
常见问题分析
1.蛋白浓度低?
处理部分样本时可能没有裂解完全,导致蛋白浓度低。只要适当延长试剂BCD的处理时间即可。最好在持续振荡的条件下处理,没有振荡器也可间隔几分钟用吸头吹打混匀。
2.用什么方法定量蛋白?
建议用BCA法。不适合用Bradford法,因为试剂A中含有干扰Bradford法的组份,导致定量不准。如果已经进行过透析处理或者用脱盐柱改换过缓冲体系,则可以用Bradford法定量。
3.提取的蛋白具有活性吗?
本试剂盒不含有离子型去垢剂组份,不破坏蛋白的结构,没有对蛋白质之间原有的相互作用的破坏,蛋白均保持其天然构象和活性。
处理部分样本时可能没有裂解完全,导致蛋白浓度低。只要适当延长试剂BCD的处理时间即可。最好在持续振荡的条件下处理,没有振荡器也可间隔几分钟用吸头吹打混匀。
2.用什么方法定量蛋白?
建议用BCA法。不适合用Bradford法,因为试剂A中含有干扰Bradford法的组份,导致定量不准。如果已经进行过透析处理或者用脱盐柱改换过缓冲体系,则可以用Bradford法定量。
3.提取的蛋白具有活性吗?
本试剂盒不含有离子型去垢剂组份,不破坏蛋白的结构,没有对蛋白质之间原有的相互作用的破坏,蛋白均保持其天然构象和活性。
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